Marcelo González Ortiz

Profesor Asistente
Doctor en Ciencias Biológicas mención Ciencias Fisiológicas, Pontificia Universidad Católica de Chile

Edificio del Arco, 3er Piso. Departamento de Fisiología
(+56-41) 266-1207
(+56-2) 2354-2717
mgonzalezo@udec.cl
Laboratorio de Fisiología Vascular.

Docencia

Pregrado

  • Fisiología para Obstetricia y Puericultura (Profesor encargado), Odontología, Tecnología Médica, Enfermería, Kinesiología, Nutrición y Dietética, Bioquímica, Química y Farmacia, Ingeniería Civil Biomédica, Pedagogía en Cs. Naturales y Biología.

Postgrado

  • Fisiología y fisiopatología endotelial (electivo)
  • Seminario bibliográfico I para el Magister en Fisiología Humana.
  • Participante de los cursos de Fisiología Avanzada I y II del Magister en Fisiología Humana
  • Colaborador en cursos de los Magister en Bioquímica Clínica e Inmunología, en Salud sexual y Reproductiva y en Biomedicina (U. de Talca).
  • Habilitado como profesor guía de Tesis en el Magister en Fisiología Humana, Magister en Salud Sexual y Reproductiva y en el Doctorado en Biología Celular y Molecular.

Líneas de Investigación

Nuestro trabajo busca explicar fenómenos fisiológicos y/o fisiopatológicos desde la complejidad tejido/célula/molécula, en base a técnicas de fisiología vascular clásicas (miografía de alambre, perfusión de placenta), cultivo celular (células endoteliales de placenta humana), biofísica (transporte de membrana y electrofisiología), biología molecular (RT-PCR, qPCR, clonamiento), bioquímica (western blot, fraccionamiento celular, actividad enzimática), etc. Nuestros objetivos se centran en dilucidar mecanismos relevantes para la regulación vascular y cómo éstos se ven alterado en condiciones de estrés asociadas a patologías de alta incidencia en la población como son las enfermedades metabólicas y cardiovasculares. Entre estos mecanismos, nos interesan principalmente los relacionados con la regulación de la captación de L-arginina para la síntesis de óxido nítrico, la síntesis de especies reactivas del oxígeno mediada por NADPH oxidasa y la regulación del potencial de membrana de células endoteliales por parte de canales de potasio activados por calcio.

Proyectos

  • VRID-Enlace 216.033.108-1.0 (PI) (2015-2016) Caracterización de la expresión y actividad de hCATs, NADPH oxidasa y KCa en vasos sanguíneos de placenta humana proveniente de mujeres con diabetes gestacional.
  • VRID-Asociativo 213.A84.014-1.0 (CoI) (2014-2015). Correlación entre características clínicas, resultados perinatales y marcadores moleculares de disfunción endotelial en pacientes con Diabetes Gestacional (w/M Cid, UdeC).
  • FONDECYT 1120148 (CoI) (2012-2015). Evaluation of novel technologies for the extraction, purification and stabilization of natural proanthocyanidins: functionalized as possible phytodrug. (w/ K Fernández, UdeC).
  • FONDEF–IDeA CA12I10374 (CoI) (Chile, 2012-2014). Bio-obtención de nanopartículas de selenio encapsuladas en polisacáridos para su potencial uso como suplemento alimentario. (w/ M Mondaca, UdeC).
  • FONDECYT 11100192 (PI) (2010-2013). Regulation of expression and activity of hCAT-1 by reactive oxygen species in human endothelium exposed to insulin and high concentrations of D-glucose.
  • DIUC 210.033.103-1.0 (PI) (2010/2012). hCATs and NADPH oxidase roles in vascular dysfunction induced by high extracelular D-glucose in human umbilical vein.
  • DIUC 211.032.015-1.0 (CoI) (2010/2012). Participación de Agmatina como Neuromodulador en el Proceso de Tolerancia y Dependencia de Opiaceos.
  • CONICYT AT-23070213 (PI) (2007-2009). Transcriptional regulation of SLC7A1by insulin in human fetal endothelial cells exposed to high extracelular D-glucose: Roles of NF-ĸB, Sp1 and ROS.

Publicaciones

  1. Transport of biodegradable polymeric particles loaded with grape seed extract across Caco-2 cell monolayers. Parada MS, González M, Fernández K. International Journal of Food Science and Technology. Aceptado.
  2. Akt/mTOR role in human foetoplacental vascular insulin resistance in diseases of pregnancy. Villalobos-Labra R, Silva L, Subiabre M, Araos J, Salsoso R, Fuenzalida B, Sáez T, Toledo F, Gonzalez M, Quezada C, Pardo F, Chiarello D, Leiva A, Sobrevia L. Journal of Diabetes Research. Aceptado.
  3. Pro-angiogenic Role of Insulin: From Physiology to Pathology. Escudero CA, Herlitz K, Troncoso F, Guevara K, Acurio J, Aguayo C, Godoy AS, González M. Frontiers in Physiology. 2017; 8:204.
  4. Gestational diabetes mellitus is associated with increased pro-migratory activation of vascular endothelial growth factor receptor 2 and reduced expression of vascular endothelial growth factor receptor 1. Troncoso F, Acurio J, Herlitz K, Aguayo C, Bertoglia P, Guzman-Gutierrez E, Loyola M, Gonzalez M, Rezgaoui M, Desoye G, Escudero C. PLoS One. 2017; 12(8):e0182509.
  5. Insulin induces relaxation and decreases hydrogen peroxide-induced vasoconstriction in human placental vascular bed in a mechanism mediated by calcium-activated potassium channels and L-arginine/nitric oxide pathways. Cabrera L, Saavedra A, Rojas S, Cid M, Valenzuela C, Gallegos D, Careaga P, Basualto E, Haensgen A, Peña E, Rivas C, Vera JC, Gallardo V, Zúñiga L, Escudero C, Sobrevia L, Wareing M, González M. Frontiers in Physiology. 2016; 7:529.
  6. Cardiovascular action of insulin in health and disease: focus in endothelial L-arginine transport and cardiac voltage-dependent potassium channels. Dubó S, Gallegos D, Cabrera L, Sobrevia L, Zúñiga L, González M. Frontiers in Physiology. 2016; 7: 74
  7. Insulin Is a Key Modulator of Fetoplacental Endothelium Metabolic Disturbances in Gestational Diabetes Mellitus. Sobrevia L, Salsoso R, Fuenzalida B, Barros E, Toledo L, Silva L, Pizarro C, Subiabre M, Villalobos R, Araos J, Toledo F, González M, Gutiérrez J, Farías M, Chiarello DI, Pardo F, Leiva A. Frontiers in Physiology. 2016; 7: 119.
  8. Synthesis and characterization of polyhydroxybutyrate-co-valerate nanoparticles for encapsulation of quercetin. Lightfoot S, Bouza R, Pérez M, Haensgen A, González M, Rojas C, Rodríguez-Llamazares S. J Bioact Compat Polym. 2016; 31(5): 439-452
  9. Potential benefits of physical activity during pregnancy for the reduction of gestational diabetes prevalence and oxidative stress. Cid M, González M. Early Hum Dev. 2016; 94: 57-62.
  10. Biología del desarrollo vascular: Mecanismos en condiciones fisiológicas y estrés de flujo. Rodríguez I, Romero F, González M, Ribeiro de Campo R. Int J Morphol; 2015; 33: 1348-1354.
  11. Insulin reverses D-glucose-increased nitric oxide and reactive oxygen species generation in human umbilical vein endothelial cells. González M, Rojas S, Avila P, Cabrera L, Villalobos R, Palma C, Aguayo C, Peña E, Gallardo V, Guzmán-Gutiérrez E, Sáez T, Salsoso R, Sanhueza C, Pardo F, Leiva A, Sobrevia L. (2015). PLoS One. 2015; 10(4):e0122398.
  12. Physiological mechanisms of vascular response induced by shear stress and effect of exercise in systemic and placental circulation. Rodríguez I, González M. Frontiers in Pharmacology; 2014: 5:209.
  13. Lemon grass (Cymbopogon citratus (D.C) Stapf) polyphenols protect human umbilical vein endothelial cell (HUVECs) from oxidative damage induced by high glucose, hydrogen peroxide and oxidised low-density lipoprotein. Campos J, Schmeda-Hirschmann G, Leiva E, Guzmán L, Orrego R, Fernández P, González M, Radojkovic C, Zuñiga FA, Lamperti L, Pastene E, Aguayo C. Food Chemistry. 2014; 151: 175–181.
  14. Supplementation with apple enriched with L-arginine may improve metabolic control and survival rate in alloxan-induced diabetic rats. Escudero A, Petzold G, Moreno J, González M, Junod J, Aguayo C, Acurio J, Escudero C. Biofactors. 2013; 39(5):564-574.
  15. Impaired A2A adenosine receptor/nitric oxide/VEGF signaling pathway in fetal endothelium during late- and early-onset preeclampsia. Escudero C, Bertoglia P, Hernadez M, Celis C, González M, Aguayo C, Acurio J. Purinergic Signaling. 2013; 9(2):215-226.
  16. Biosynthesis of selenium nanoparticles by Pantoeaagglomerans and their antioxidant activity. Torres S, Campos V, León C, Rodríguez-Llamazares S, Rojas S, González M, Smith C, Mondaca M. J Nanopart Res; 2012: 14:1236.
  17. L-arginine transport and nitric oxide synthesis in human endothelial progenitor cells. Díaz-Pérez F, Radojkovic C, Aguilera V, Veas C, González M, Lamperti L, Escudero C, Aguayo C. J Cardiovasc Pharmacol. 2012; 60 (5):439-449.
  18. Insulin-increased L-arginine transport requires A(2A) adenosine receptors activation in human umbilical vein endothelium. Guzmán-Gutiérrez E, Westermeier F, Salomón C, González M, Pardo F, Leiva A, Sobrevia L. PLoS One. 2012; 7 (7): e41705.
  19. Insulin Restores Gestational Diabetes Mellitus-Reduced Adenosine Transport Involving Differential Expression of Insulin Receptor Isoforms in Human Umbilical Vein Endothelium. Westermeier F, Salomón C, González M, Puebla C, Guzmán-Gutiérrez E, Cifuentes F, Leiva A, Casanello P, Sobrevia L. 2011; 60 (6):1677-1687.
  20. Fetal endothelium dysfunction is associated with circulating maternal levels of sE-selectin, sVCAM1, and sFlt-1 during pre-eclampsia. Veas CJ, Aguilera VC, Muñoz IJ, Gallardo VI, Miguel PL, González M, Lamperti LI, Escudero CA, Aguayo CR. Journal of Maternal-fetal & Neonatal Medicine. 2011; 24 (11): 1371-1377.
  21. Insulin-stimulated L-arginine transport requires SLC7A1 gene expression and is associated with human umbilical vein relaxation. González M, Gallardo V, Rodríguez N, Salomón C, Westermeier F, Guzmán-Gutiérrez E, Abarzúa F, Leiva A, Casanello P, Sobrevia L. Journal of Cellular Physiology. 2011; 226 (11): 2916-2924.
  22. A role for insulin on L-arginine transport in fetal endothelial dysfunction in hyperglycaemia. Sobrevía L, González M. Current Vascular Pharmacology. 2009; 7(4): 467-474.
  23. Reduced L-arginine transport and nitric oxide synthesis in human umbilical vein endothelial cells from intrauterine growth restriction pregnancies is not further altered by hypoxia. Casanello P, Krause B, Torres E, Gallardo V, González M, Prieto C, Escudero C, Farías M, Sobrevia L. Placenta. 2009; 30(7): 625-633.
  24. High D-glucose reduces SLC29A1 promoter activity and adenosine transport involving specific protein 1 in human umbilical vein endothelium. Puebla C, Farías M, González M, Vecchiola A, Aguayo C, Krause B, Pastor-Anglada M, Casanello P, Sobrevia L. Journal Cell Physiology. 2008; 215(3):645-656.
  25. Equilibrative nucleoside transporter 1 expression is downregulated by hypoxia in human umbilical vein endothelium. Casanello P, Torres A, Sanhueza F, González M, Farías M, Gallardo V, Pastor-Anglada M, San Martín R, Sobrevia L. Circulation Research. 2005; 97(1):16-24
  26. Equilibrative nucleoside transporter 2 is expressed in human umbilical vein endothelium, but is not involved in the inhibition of adenosine transport induced by hyperglycaemia. Aguayo C, Casado J, González M, Pearson JD, San Martín R, Casanello P, Pastor-Anglada M, Sobrevia L. Placenta. 2005; 26(8-9):641-653.
  27. Role of adenosine transport in gestational diabetes-induced L-arginine transport and nitric oxide synthesis in human umbilical vein endothelium. Vásquez G, Sanhueza F, Vásquez R, González M, San Martín R, Casanello P, Sobrevia L. Journal of Physiology. 2004; 560:111-122.
  28. Cell signalling-mediating insulin increase of mRNA expression for cationic amino acid transporters 1 and 2, and membrane hyperpolarization in human umbilical vein endothelium. González M, Flores C, Pearson JD, Casanello P, Sobrevia L. Pflügers Archives – European Journal of Physiology. 2004; 448: 383-394.

Capítulos de libros

González M. Regulation of expression and activity of L-arginine transporters by nutrients and hormones: A focus in transcriptional mechanisms regulated by glucose and insulin. In Arginine in Clinical Nutrition. Ed. Springer, Switzerland. 2017. DOI: 10.1007/978-3-319-26009-9.

Escudero C, González M, Acurio J, Valenzuela F, Sobrevia L. The role of placenta in the fetal programming associated to gestational diabetes. In: Gestational Diabetes – Causes, Diagnosis and Treatment. Ed. InTech, Croatia. 2013. Chapter 7, pp 135-162.

Sobrevia L, Guzmán-Gutiérrez E, Westermeier F, Salomón C, Arroyo P, Palacios E, Bugueño K, Santos M, Diez de Medina C, González M, Escudero C, Salsoso R, Mate A, Vásquez CM, Pardo F, Leiva A. Fetoplacental vascular pathophysiology in preeclampsia. In: Recent Research Developments in Physiology. Ed. Research Signpost, India. 2012. Vol. 5, Chapter 7, pp 105-158.

González M, Muñoz E, Puebla C, Guzmán-Gutiérrez E, Cifuentes F, Nien JK, Abarzúa F, Leiva A, Casanello P, Sobrevia L. Maternal and fetal metabolic dysfunction in pregnancy diseases associated with vascular oxidative and nitrative stress. In: The Molecular Basis for Origin of Fetal Congenital Abnormalities and Maternal Health: An overview of Association with Oxidative Stress. Ed. Bentham, USA. 2011. Chapter 8, pp 98-115.

Laboratorio

El Dr. González es Investigador Principal del Laboratorio de Fisiología Vascular.

Equipo conformado por:

  • Susana Rojas (Técnico de Laboratorio)
  • Emerita Basualto (tesista de Bioquímica)
  • Natalia Vallejos (tesista de Bioquímica)
  • Andrea Saavedra (estudiante de Magister en Fisiología Humana)
  • Marcela Cid (Matrona, Investigadora clínica)